2025年6月份，中國科學(xué)院武漢病毒研究所科研團(tuán)隊(duì)在《ACS Nano》期刊發(fā)表了題為“Epitope-Optimized Influenza Hemagglutinin Nanoparticle Vaccine Provides Broad Cross-Reactive Immunity against H9N2 Influenza Virus"的研究論文。該研究成功開發(fā)出一種針對H9N2流感病毒的表位優(yōu)化型納米顆粒疫苗，在動物模型中展現(xiàn)出對多種H9N2毒株的廣譜交叉免疫保護(hù)效力，為全球 H9N2 流感疫情的防控提供了創(chuàng)新性解決方案。

摘要

H9N2病毒（AIV）對全球家禽業(yè)構(gòu)成日益嚴(yán)重的威脅，并持續(xù)存在感染人類的風(fēng)險(xiǎn)。疫苗接種是預(yù)防和控制H9N2 AIV的關(guān)鍵策略。然而，病毒的持續(xù)進(jìn)化不斷挑戰(zhàn)免疫保護(hù)的效率。因此，開發(fā)一種能夠引發(fā)廣譜免疫反應(yīng)的通用H9N2流感疫苗對于疫情防控至關(guān)重要。本研究報(bào)道了一種表位優(yōu)化的納米顆粒（NPs）疫苗，該疫苗能夠引發(fā)針對H9N2流感病毒的廣泛交叉反應(yīng)性免疫。利用計(jì)算算法Epigraph，我們首先設(shè)計(jì)了三個(gè)具有優(yōu)化表位的H9血凝素（HA1）球狀頭部。隨后，每個(gè)抗原與mi3 NPs結(jié)合，并將這三種構(gòu)建體以等摩爾比例混合，生成Epigraph疫苗。我們將Epigraph疫苗與目前推薦的候選疫苗病毒（CVV）AL/39進(jìn)行了比較。Epigraph疫苗在小鼠中有效誘導(dǎo)了交叉反應(yīng)性抗體，并激活了CD4+和CD8+ T細(xì)胞免疫反應(yīng)。此外，該疫苗對多種H9N2毒株的致死性攻擊提供了有效保護(hù)，并顯著降低了小鼠肺部的病毒載量。本研究為應(yīng)對未來H9N2疫情提供了一種有前景的通用疫苗候選方案。

介紹

H9N2亞型病毒（AIV）于1966年從美國威斯康星州的火雞中分離，現(xiàn)已在歐亞大陸、中東和非洲國家的多種家禽中形成地方性流行，對全球家禽業(yè)造成嚴(yán)重經(jīng)濟(jì)損失，并在哺乳動物和人類中引發(fā)零星感染。自1994年在中國分離以來，經(jīng)過20多年的傳播與進(jìn)化，H9N2已取代H7N9和H5N6病毒，成為中國禽類中的主要AIV亞型。目前，H9N2無需適應(yīng)性突變即可直接感染人類，引發(fā)不同程度的呼吸道疾病。自1998年報(bào)告人類感染H9N2病例以來，2014年至2016年間，中國部分省份職業(yè)暴露人群的H9N2 AIV血清陽性率已達(dá)11.20%，表明禽類從業(yè)人員感染H9N2的風(fēng)險(xiǎn)顯著增加。

此外，自2020年以來，人類感染H9N2的病例數(shù)量顯著上升。截至目前，已有超過150人感染H9N2 AIV。系統(tǒng)發(fā)育分析表明，H9N2病毒是人類H5N1、H7N9、H3N8和H10N8病毒內(nèi)部基因的供體，凸顯了其在新型流感病毒株出現(xiàn)中的關(guān)鍵作用。

近期研究表明，大多數(shù)H9N2病毒已獲得與人類型受體（α2,6唾液酸）結(jié)合的能力，這凸顯了采取有效措施預(yù)防和控制H9N2傳播的緊迫性。開發(fā)針對潛在大流行亞型的疫苗是大流行防控的關(guān)鍵策略。迄今為止，已開發(fā)出多種H9N2候選疫苗。然而，中國的H9N2病毒經(jīng)歷了廣泛的基因重配，導(dǎo)致新基因型的不斷出現(xiàn)。這種持續(xù)的抗原變異顯著促進(jìn)了病毒在免疫禽類中的傳播。盡管市售H9N2疫苗對匹配抗原的毒株普遍有效，但其對不匹配抗原毒株的保護(hù)效力有限。例如，1997年至2002年間分離的大多數(shù)H9N病毒與代表性疫苗株SD/6/96相比，表現(xiàn)出抗原漂移。疫苗株與流行株之間的不匹配使得有效控制H9N2病毒的傳播更加復(fù)雜，凸顯了改進(jìn)疫苗技術(shù)并產(chǎn)生針對多種H9N2流感病毒的廣泛交叉免疫的迫切需求。

Epigraph是一種高效的基于圖的算法，通過所有潛在9聚體T細(xì)胞表位的覆蓋范圍來設(shè)計(jì)疫苗抗原。該算法已應(yīng)用于開發(fā)治療性HIV疫苗候選物和泛絲狀病毒疫苗候選物。在小鼠和豬模型中，使用Epigraph算法設(shè)計(jì)的流感病毒候選疫苗表現(xiàn)出優(yōu)于市售全滅活四價(jià)豬流感疫苗的交叉免疫反應(yīng)。使用Epigraph算法設(shè)計(jì)的腺病毒載體疫苗已顯示出對豬H3亞型流感病毒的強(qiáng)保護(hù)性免疫反應(yīng)。此外，計(jì)算設(shè)計(jì)的多價(jià)Epigraph血凝素疫苗在小鼠模型中表現(xiàn)出對乙型流感病毒的保護(hù)效力。該算法能夠高效計(jì)算設(shè)計(jì)單抗原或多抗原疫苗，病原體群體的潛在表位覆蓋范圍，并適用于包括疫苗開發(fā)在內(nèi)的抗原設(shè)計(jì)項(xiàng)目。

血凝素（HA）蛋白是流感病毒表面暴露的糖蛋白，是自然和疫苗介導(dǎo)的甲型流感病毒免疫中免疫原性的靶點(diǎn)。HA通過結(jié)合細(xì)胞表面受體并誘導(dǎo)膜融合啟動感染，同時(shí)也是抗流感藥物的主要靶點(diǎn)。位于HA蛋白球狀頭部的受體結(jié)合域已被確定為疫苗接種后引發(fā)有效中和抗體的關(guān)鍵。盡管在開發(fā)基于HA的疫苗方面做出了諸多努力，但亞單位疫苗的低免疫原性仍然是一個(gè)限制因素。為克服這一限制，已使用多種類型的納米顆粒（NPs）通過多價(jià)抗原呈遞增強(qiáng)流感亞單位疫苗的免疫原性，包括病毒樣顆粒（VLPs）、噬菌體、多糖和病毒體。例如，計(jì)算設(shè)計(jì)并優(yōu)化的突變體i3?01（mi3）已被用作納米級支架以增強(qiáng)抗原免疫原性。

抗原與納米顆粒的偶聯(lián)可通過自發(fā)連接的SpyTag-SpyCatcher蛋白質(zhì)共價(jià)鍵合策略實(shí)現(xiàn)。該系統(tǒng)展現(xiàn)出顯著的連接效率和穩(wěn)定性。在本研究中，我們將三個(gè)表位優(yōu)化的HA1蛋白通過SpyTag共價(jià)連接到經(jīng)SpyCatcher修飾的納米顆粒上，使目標(biāo)蛋白能夠輕松附著于納米顆粒表面。通過將三種納米顆?；旌?，我們設(shè)計(jì)了一種Epigraph疫苗候選物。動物實(shí)驗(yàn)表明，該Epigraph疫苗能夠誘導(dǎo)高效且廣泛的體液和細(xì)胞免疫反應(yīng)，并對不同H9N2病毒株的致死性攻擊提供充分保護(hù)。本研究支持Epigraph疫苗作為通用型H9N2流感疫苗的潛在候選物。

近期研究表明，大多數(shù)H9N2病毒已獲得與人類型受體（α2,6唾液酸）結(jié)合的能力，這凸顯了采取有效措施預(yù)防和控制H9N2傳播的緊迫性。開發(fā)針對潛在大流行亞型的疫苗是大流行防控的關(guān)鍵策略。迄今為止，已開發(fā)出多種H9N2候選疫苗。然而，中國的H9N2病毒經(jīng)歷了廣泛的基因重配，導(dǎo)致新基因型的不斷出現(xiàn)。這種持續(xù)的抗原變異顯著促進(jìn)了病毒在免疫禽類中的傳播。盡管市售H9N2疫苗對匹配抗原的毒株普遍有效，但其對不匹配抗原毒株的保護(hù)效力有限。例如，1997年至2002年間分離的大多數(shù)H9N2病毒與代表性疫苗株SD/6/96相比，表現(xiàn)出抗原漂移。疫苗株與流行株之間的不匹配使得有效控制H9N2病毒的傳播更加復(fù)雜，凸顯了改進(jìn)疫苗技術(shù)并產(chǎn)生針對多種H9N2流感病毒的廣泛交叉免疫的迫切需求。

Epigraph是一種高效的基于圖的算法，通過所有潛在9聚體T細(xì)胞表位的覆蓋范圍來設(shè)計(jì)疫苗抗原。該算法已應(yīng)用于開發(fā)治療性HIV疫苗候選物和泛絲狀病毒疫苗候選物。在小鼠和豬模型中，使用Epigraph算法設(shè)計(jì)的流感病毒候選疫苗表現(xiàn)出優(yōu)于市售全滅活四價(jià)豬流感疫苗的交叉免疫反應(yīng)。使用Epigraph算法設(shè)計(jì)的腺病毒載體疫苗已顯示出對豬H3亞型流感病毒的強(qiáng)保護(hù)性免疫反應(yīng)。此外，計(jì)算設(shè)計(jì)的多價(jià)Epigraph血凝素疫苗在小鼠模型中表現(xiàn)出對乙型流感病毒的保護(hù)效力。該算法能夠高效計(jì)算設(shè)計(jì)單抗原或多抗原疫苗，不同病原體群體的潛在表位覆蓋范圍，并適用于包括疫苗開發(fā)在內(nèi)的抗原設(shè)計(jì)項(xiàng)目。

血凝素（HA）蛋白是流感病毒表面暴露的糖蛋白，是自然和疫苗介導(dǎo)的甲型流感病毒免疫中免疫原性的靶點(diǎn)。HA通過結(jié)合細(xì)胞表面受體并誘導(dǎo)膜融合啟動感染，同時(shí)也是抗流感藥物的主要靶點(diǎn)。位于HA蛋白球狀頭部的受體結(jié)合域已被確定為疫苗接種后引發(fā)有效中和抗體的關(guān)鍵。盡管在開發(fā)基于HA的疫苗方面做出了諸多努力，但亞單位疫苗的低免疫原性仍然是一個(gè)限制因素。為克服這一限制，已使用多種類型的納米顆粒（NPs）通過多價(jià)抗原呈遞增強(qiáng)流感亞單位疫苗的免疫原性，包括病毒樣顆粒（VLPs）、噬菌體、多糖和病毒體。例如，計(jì)算設(shè)計(jì)并優(yōu)化的突變體i3?01（mi3）已被用作納米級支架以增強(qiáng)抗原免疫原性。
抗原與納米顆粒的偶聯(lián)可通過自發(fā)連接的SpyTag-SpyCatcher蛋白質(zhì)共價(jià)鍵合策略實(shí)現(xiàn)。該系統(tǒng)展現(xiàn)出顯著的連接效率和穩(wěn)定性。在本研究中，我們將三個(gè)表位優(yōu)化的HA1蛋白通過SpyTag共價(jià)連接到經(jīng)SpyCatcher修飾的納米顆粒上，使目標(biāo)蛋白能夠輕松附著于納米顆粒表面。通過將三種納米顆粒混合，我們設(shè)計(jì)了一種Epigraph疫苗候選物。動物實(shí)驗(yàn)表明，該Epigraph疫苗能夠誘導(dǎo)高效且廣泛的體液和細(xì)胞免疫反應(yīng)，并對不同H9N2病毒株的致死性攻擊提供充分保護(hù)。本研究支持Epigraph疫苗作為通用型H9N2流感疫苗的潛在候選物。

結(jié)果

H9表位抗原的設(shè)計(jì)與開發(fā)

H9表位抗原是使用Epigraph疫苗在線設(shè)計(jì)工具進(jìn)行設(shè)計(jì)的，該工具采用了一種高效的基于圖的算法，通過將每個(gè)連續(xù)的抗原表位長度片段（即每個(gè)k-mer）視為潛在抗原表位，從而病原體群體的潛在表位覆蓋范圍。通常，k=9被設(shè)定為潛在T細(xì)胞表位（PTE）的長度，因?yàn)檫@是大多數(shù)細(xì)胞毒性T細(xì)胞I類表位的最佳長度。在抗原設(shè)計(jì)之前，我們從GISAID下載了截至2022年11月的所有可用H9N2 HA1序列。設(shè)計(jì)過程首先將數(shù)據(jù)集中的每個(gè)序列分解為所有可能的9-mer，并計(jì)算每個(gè)9-mer在樣本群體中的頻率值（覆蓋分?jǐn)?shù)）。隨后，該算法從具有最高覆蓋分?jǐn)?shù)的短序列（9-mer）中組裝出一組代表性蛋白序列（Epigraph0），確保該序列包含目標(biāo)病毒群體中最常見的潛在9-mer表位。對于單價(jià)疫苗，單一抗原已足夠。然而，為了進(jìn)一步提高覆蓋范圍，該算法去除由Epigraph0覆蓋的表位，并生成第二個(gè)互補(bǔ)序列（Epigraph1）。此過程重復(fù)進(jìn)行以生成第三個(gè)互補(bǔ)序列（Epigraph2）。Epigraph0代表的單一抗原，Epigraph1是最佳互補(bǔ)抗原，依此類推。雖然增加Epigraph序列的數(shù)量可以提高群體覆蓋范圍，但隨著越來越罕見的表位被納入，收益逐漸遞減。最終的三價(jià)Epigraph免疫原（由Epigraph0、Epigraph1和Epigraph2抗原混合而成）為群體中的潛在線性表位提供了覆蓋。

為了可視化三個(gè)Epigraph序列與整個(gè)群體之間的關(guān)系，我們使用MAFFT將序列與來自流感研究數(shù)據(jù)庫的6,445個(gè)H9 HA1蛋白序列進(jìn)行比對，并構(gòu)建了最大似然（ML）系統(tǒng)發(fā)育樹（圖1A）。通過BLAST比對，我們在數(shù)據(jù)庫中識別出最相似的野生型序列如下：Epigraph0-A/雞/北京/XY1125/2014（序列一致性：99.7%），Epigraph1-A/雞/安徽/A3176/2014（序列一致性：90.21%），以及Epigraph2-A/雞/大阪/aq69/2001（序列一致性：90%）。為了評估Epigraph疫苗的效力，我們將其與當(dāng)前推薦的候選疫苗病毒（CVV）A/安徽-廬江/39/2018（AL/39，2018年的人類分離株）進(jìn)行了比較，該疫苗是世界衛(wèi)生組織（WHO）于2018年推薦的候選滅活疫苗。

Production and Characterization of H9 Epigraph-mi3NPs

TH9 Epigraph-mi3納米顆粒的制備與表征。納米顆粒的尺寸對于激發(fā)免疫反應(yīng)至關(guān)重要，其必須與病原體尺寸相當(dāng)，才能被免疫細(xì)胞有效識別。因此，它們可作為載體，將抗原高效遞送至抗原呈遞細(xì)胞（APC），并誘導(dǎo)最佳的免疫激活反應(yīng)。本研究采用mi3納米顆粒作為抗原展示的納米級支架，以提升免疫系統(tǒng)的激活效率。該支架是一種自組裝的多孔十二面體結(jié)構(gòu)，由60個(gè)相同亞基構(gòu)成，作為多聚化納米顆粒平臺，為免疫原性較弱的抗原提供安全且具有免疫原性的疫苗接種系統(tǒng)。

如先前所述，SpyTag是一種13個(gè)氨基酸的肽段，可在短時(shí)間內(nèi)與其蛋白伴侶SpyCatcher（92個(gè)氨基酸）形成共價(jià)鍵（圖1B）。SpyCatcher/SpyTag系統(tǒng)因其簡便性、快速性及實(shí)現(xiàn)體外蛋白質(zhì)自組裝的能力而被廣泛應(yīng)用于蛋白質(zhì)偶聯(lián)。因此，我們將SpyCatcher融合至mi3的N端（圖1C）。如圖1D、E所示，SpyCatcher-mi3在大腸桿菌細(xì)胞質(zhì)中可溶且高效表達(dá)，并通過鎳柱親和層析及尺寸排阻色譜（SEC）進(jìn)行純化。十二烷基*-聚丙烯酰胺凝膠電泳（SDS-PAGE）分析顯示，SpyCatcher-mi3納米顆粒呈現(xiàn)單一清晰條帶，SEC色譜圖中觀察到單一主峰，表明其結(jié)構(gòu)均一且純度較高。負(fù)染透射電子顯微鏡（TEM）顯示，SpyCatcher-mi3組裝成預(yù)期的十二面體球形顆粒，直徑約為26 nm，略小于動態(tài)光散射（DLS）測得的流體力學(xué)直徑（圖1F、G）。為評估m(xù)i3納米顆粒的穩(wěn)定性，我們進(jìn)行了SDS-PAGE分析。將mi3納米顆粒在37、25、4及?80 °C下孵育1周，以評估其潛在降解情況。結(jié)果表明，mi3納米顆粒在所有測試溫度下均保持高度穩(wěn)定（圖S1A），符合疫苗生產(chǎn)中納米顆粒支架的標(biāo)準(zhǔn)。
我們將SpyTag融合至密碼子優(yōu)化的Epigraph HA基因的C端，將其克隆至pCAGGS載體中，并瞬時(shí)轉(zhuǎn)染HEK293F細(xì)胞，獲得Epigraph0-SpyTag、Epigraph1-SpyTag及Epigraph2-SpyTag抗原。SDS-PAGE分析顯示，三種Epigraph抗原均呈現(xiàn)單一清晰條帶，表明抗原純度較高（圖1D）。穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)表明，Epigraph抗原在37、25、4及?80 °C下孵育1周后仍保持穩(wěn)定（圖S1A）。

我們將SpyTag融合到密碼子優(yōu)化的Epigraph HA基因的C端，將其克隆到pCAGGS載體中，并通過瞬時(shí)轉(zhuǎn)染HEK293F細(xì)胞獲得了Epigraph0-SpyTag、Epigraph1-SpyTag和Epigraph2-SpyTag抗原。SDS-PAGE分析顯示，所有三種Epigraph抗原均呈現(xiàn)單一清晰的條帶，表明抗原純度較高（圖1D）。穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)表明，Epigraph抗原在37°C、25°C、4°C和?80°C下孵育1周后仍保持穩(wěn)定（圖S1A）。

為制備Epigraph-mi3納米顆粒（NPs），我們首先評估了SpyCatcher-mi3與Epigraph-SpyTag在不同比例下的結(jié)合效率。結(jié)果顯示，隨著Epigraph-SpyTag量的增加，殘留的SpyCatcher-mi3逐漸減少。值得注意的是，當(dāng)SpyCatcher-mi3與Epigraph-SpyTag的摩爾比達(dá)到1:4時(shí)，SpyCatcher-mi3的減少不再明顯，表明支架已達(dá)到飽和且存在過量的未結(jié)合Epigraph-SpyTag（圖S2）?；谶@些發(fā)現(xiàn)，我們將15 μM的SpyCatcher-mi3與60 μM的Epigraph-SpyTag（mi3 NPs支架與Epigraph抗原的比例為1:4）在4°C下孵育過夜進(jìn)行體外結(jié)合反應(yīng)，隨后通過SEC純化去除未反應(yīng)的Epigraph抗原和未結(jié)合的mi3 NPs。圖1D中的SDS-PAGE結(jié)果顯示，結(jié)合產(chǎn)物Epigraph-mi3呈現(xiàn)單一清晰的條帶，明顯大于Epigraph抗原和mi3，證實(shí)Epigraph抗原已有效結(jié)合到mi3 NPs上。這一結(jié)果在SEC色譜圖中Epigraph-mi3 NPs峰的前移中得到了進(jìn)一步驗(yàn)證（圖1E）。負(fù)染TEM顯示，mi3 NPs呈現(xiàn)規(guī)則形狀的球形顆粒，而Epigraph0-mi3 NPs表面模糊，可見明顯的突出蛋白，且直徑大于mi3 NPs。圖1F中Epigraph1-mi3和Epigraph2-mi3 NPs也觀察到類似結(jié)果。DLS分析證實(shí)了顆粒尺寸分布，Epigraph-mi3 NPs的流體動力學(xué)直徑大于未結(jié)合的mi3 NPs（圖1G）。

此外，所有 Epigraph-mi3 納米顆粒的多分散性指數(shù)（PDI）值均低于 0.5，表明 Epigraph-mi3 納米顆粒具有均勻的尺寸分布（表 S1）。

為了探究將 Epigraph 抗原偶聯(lián)到 mi3 納米顆粒上是否會影響其熱穩(wěn)定性，我們將 Epigraph-mi3 納米顆粒分別在 37、25、4 和 -80 °C 下孵育 1 周。結(jié)果表明，在 -80 至 25 °C 的測試溫度范圍內(nèi)，Epigraph-mi3 納米顆粒未出現(xiàn)顯著降解（圖 S1A）。差示掃描熒光法（DSF）結(jié)果顯示，Epigraph-mi3 納米顆粒和相應(yīng)的 Epigraph 抗原表現(xiàn)出相似的熱穩(wěn)定性，具有幾乎相同的 Tm 值，這表明 Epigraph 抗原與 mi3 蛋白的融合對其結(jié)構(gòu)穩(wěn)定性沒有顯著影響（圖 S1B）。由于大多數(shù)疫苗建議在冷藏條件下（2 - 8 °C）儲存，本研究構(gòu)建的納米顆粒疫苗在常規(guī)疫苗儲存條件下保持了一定程度的熱穩(wěn)定性。

Production and Characterization of H9 Epigraph-mi3NPs

TH9 Epigraph-mi3納米顆粒的制備與表征。納米顆粒的尺寸對于激發(fā)免疫反應(yīng)至關(guān)重要，其必須與病原體尺寸相當(dāng)，才能被免疫細(xì)胞有效識別。因此，它們可作為載體，將抗原高效遞送至抗原呈遞細(xì)胞（APC），并誘導(dǎo)最佳的免疫激活反應(yīng)。本研究采用mi3納米顆粒作為抗原展示的納米級支架，以提升免疫系統(tǒng)的激活效率。該支架是一種自組裝的多孔十二面體結(jié)構(gòu)，由60個(gè)相同亞基構(gòu)成，作為多聚化納米顆粒平臺，為免疫原性較弱的抗原提供安全且具有免疫原性的疫苗接種系統(tǒng)。

如先前所述，SpyTag是一種13個(gè)氨基酸的肽段，可在短時(shí)間內(nèi)與其蛋白伴侶SpyCatcher（92個(gè)氨基酸）形成共價(jià)鍵（圖1B）。SpyCatcher/SpyTag系統(tǒng)因其簡便性、快速性及實(shí)現(xiàn)體外蛋白質(zhì)自組裝的能力而被廣泛應(yīng)用于蛋白質(zhì)偶聯(lián)。因此，我們將SpyCatcher融合至mi3的N端（圖1C）。如圖1D、E所示，SpyCatcher-mi3在大腸桿菌細(xì)胞質(zhì)中可溶且高效表達(dá)，并通過鎳柱親和層析及尺寸排阻色譜（SEC）進(jìn)行純化。十二烷基*-聚丙烯酰胺凝膠電泳（SDS-PAGE）分析顯示，SpyCatcher-mi3納米顆粒呈現(xiàn)單一清晰條帶，SEC色譜圖中觀察到單一主峰，表明其結(jié)構(gòu)均一且純度較高。負(fù)染透射電子顯微鏡（TEM）顯示，SpyCatcher-mi3組裝成預(yù)期的十二面體球形顆粒，直徑約為26 nm，略小于動態(tài)光散射（DLS）測得的流體力學(xué)直徑（圖1F、G）。為評估m(xù)i3納米顆粒的穩(wěn)定性，我們進(jìn)行了SDS-PAGE分析。將mi3納米顆粒在37、25、4及?80 °C下孵育1周，以評估其潛在降解情況。結(jié)果表明，mi3納米顆粒在所有測試溫度下均保持高度穩(wěn)定（圖S1A），符合疫苗生產(chǎn)中納米顆粒支架的標(biāo)準(zhǔn)。
我們將SpyTag融合至密碼子優(yōu)化的Epigraph HA基因的C端，將其克隆至pCAGGS載體中，并瞬時(shí)轉(zhuǎn)染HEK293F細(xì)胞，獲得Epigraph0-SpyTag、Epigraph1-SpyTag及Epigraph2-SpyTag抗原。SDS-PAGE分析顯示，三種Epigraph抗原均呈現(xiàn)單一清晰條帶，表明抗原純度較高（圖1D）。穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)表明，Epigraph抗原在37、25、4及?80 °C下孵育1周后仍保持穩(wěn)定（圖S1A）。

我們將SpyTag融合到密碼子優(yōu)化的Epigraph HA基因的C端，將其克隆到pCAGGS載體中，并通過瞬時(shí)轉(zhuǎn)染HEK293F細(xì)胞獲得了Epigraph0-SpyTag、Epigraph1-SpyTag和Epigraph2-SpyTag抗原。SDS-PAGE分析顯示，所有三種Epigraph抗原均呈現(xiàn)單一清晰的條帶，表明抗原純度較高（圖1D）。穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)表明，Epigraph抗原在37°C、25°C、4°C和?80°C下孵育1周后仍保持穩(wěn)定（圖S1A）。

為制備Epigraph-mi3納米顆粒（NPs），我們首先評估了SpyCatcher-mi3與Epigraph-SpyTag在不同比例下的結(jié)合效率。結(jié)果顯示，隨著Epigraph-SpyTag量的增加，殘留的SpyCatcher-mi3逐漸減少。值得注意的是，當(dāng)SpyCatcher-mi3與Epigraph-SpyTag的摩爾比達(dá)到1:4時(shí)，SpyCatcher-mi3的減少不再明顯，表明支架已達(dá)到飽和且存在過量的未結(jié)合Epigraph-SpyTag（圖S2）?；谶@些發(fā)現(xiàn)，我們將15 μM的SpyCatcher-mi3與60 μM的Epigraph-SpyTag（mi3 NPs支架與Epigraph抗原的比例為1:4）在4°C下孵育過夜進(jìn)行體外結(jié)合反應(yīng)，隨后通過SEC純化去除未反應(yīng)的Epigraph抗原和未結(jié)合的mi3 NPs。圖1D中的SDS-PAGE結(jié)果顯示，結(jié)合產(chǎn)物Epigraph-mi3呈現(xiàn)單一清晰的條帶，明顯大于Epigraph抗原和mi3，證實(shí)Epigraph抗原已有效結(jié)合到mi3 NPs上。這一結(jié)果在SEC色譜圖中Epigraph-mi3 NPs峰的前移中得到了進(jìn)一步驗(yàn)證（圖1E）。負(fù)染TEM顯示，mi3 NPs呈現(xiàn)規(guī)則形狀的球形顆粒，而Epigraph0-mi3 NPs表面模糊，可見明顯的突出蛋白，且直徑大于mi3 NPs。圖1F中Epigraph1-mi3和Epigraph2-mi3 NPs也觀察到類似結(jié)果。DLS分析證實(shí)了顆粒尺寸分布，Epigraph-mi3 NPs的流體動力學(xué)直徑大于未結(jié)合的mi3 NPs（圖1G）。 

此外，所有 Epigraph-mi3 納米顆粒的多分散性指數(shù)（PDI）值均低于 0.5，表明 Epigraph-mi3 納米顆粒具有均勻的尺寸分布（表 S1）。

為了探究將 Epigraph 抗原偶聯(lián)到 mi3 納米顆粒上是否會影響其熱穩(wěn)定性，我們將 Epigraph-mi3 納米顆粒分別在 37、25、4 和 -80 °C 下孵育 1 周。結(jié)果表明，在 -80 至 25 °C 的測試溫度范圍內(nèi)，Epigraph-mi3 納米顆粒未出現(xiàn)顯著降解（圖 S1A）。差示掃描熒光法（DSF）結(jié)果顯示，Epigraph-mi3 納米顆粒和相應(yīng)的 Epigraph 抗原表現(xiàn)出相似的熱穩(wěn)定性，具有幾乎相同的 Tm 值，這表明 Epigraph 抗原與 mi3 蛋白的融合對其結(jié)構(gòu)穩(wěn)定性沒有顯著影響（圖 S1B）。由于大多數(shù)疫苗建議在冷藏條件下（2 - 8 °C）儲存，本研究構(gòu)建的納米顆粒疫苗在常規(guī)疫苗儲存條件下保持了一定程度的熱穩(wěn)定性。

In Vitro Validation of the Antigenicity of Epigraph- mi3 NPs

為表征Epigraph-mi3納米顆粒的體外抗原性，我們評估了其凝集雞紅細(xì)胞的能力及其與商用H9N2血凝素（HA）抗體的結(jié)合動力學(xué)。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明，Epigraph-mi3納米顆粒表現(xiàn)出與天然H9N2病毒粒子相當(dāng)?shù)哪钚?，? mg/mL濃度下凝集效價(jià)達(dá)到128，而mi3支架未顯示任何凝集活性（圖1H）。三種Epigraph蛋白和三種Epigraph-mi3納米顆粒均以劑量依賴性方式與商用HA抗體結(jié)合。值得注意的是，Epigraph-mi3納米顆粒的抗體結(jié)合親和力顯著高于可溶性Epigraph蛋白（圖1I）。綜上所述，這些體外實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)表明，Epigraph-mi3納米顆粒保持了與天然病毒顆粒相當(dāng)?shù)哪钚院涂乖暾?，且與可溶性Epigraph蛋白相比可能具有更強(qiáng)的抗原性。

Phylogenetic Analysis of H9N2 AIVs and Representa- tive Strain Selection

對H9N2流感病毒HA基因的系統(tǒng)發(fā)育分析表明，H9N2流感病毒已演化成多個(gè)獨(dú)立分支。根據(jù)系統(tǒng)發(fā)育樹（圖2），H9亞型流感病毒被劃分為四個(gè)譜系：h9.1、h9.2、h9.3和h9.4。其中，h9.1和h9.2譜系與1966年北美早期分離株相關(guān)。h9.3譜系分布最為廣泛，涵蓋亞洲、歐洲、非洲、太平洋地區(qū)和北美。h9.4譜系為最大分支，包括h9.4.1（G1樣譜系）和h9.4.2（BJ94樣譜系），自1994年以來在亞洲多數(shù)國家流行。中國境內(nèi)的H9N2病毒主要屬于h9.4.2譜系，該譜系進(jìn)一步劃分為h9.4.2.1、h9.4.2.2、h9.4.2.3、h9.4.2.4、h9.4.2.5和h9.4.2.6。2007年以前，中國H9N2病毒主要屬于h9.4.2.1至h9.4.2.4譜系；h9.4.2.6譜系病毒在2010年至2016年間曾短期流行，而h9.4.2.5譜系目前在中國占據(jù)主導(dǎo)地位。為評估Epigraph疫苗的交叉反應(yīng)性，本研究選取了17株具有代表性的H9病毒，分別屬于系統(tǒng)發(fā)育樹中的不同譜系（圖2，表S2）。這些毒株的選擇充分反映了H9N2病毒的遺傳多樣性和進(jìn)化動態(tài)，確保了對疫苗廣譜效力的全面評估。

Strong Antibody Responses in Mice

將純化的Epigraph0-mi3、Epigraph1-mi3和Epigraph2-mi3納米顆粒按等摩爾比例混合，配制出Epigraph疫苗。作為對照疫苗的AL/39滅活疫苗，是通過β-丙內(nèi)酯（BPL）滅活在雞胚中培養(yǎng)的AL/39株病毒，隨后使用蔗糖密度梯度法純化制備而成。為評估Epigraph疫苗的免疫原性，小鼠在第0天通過肌肉注射進(jìn)行初次免疫，3周后進(jìn)行加強(qiáng)免疫。每次免疫后2周采集血清樣本用于后續(xù)分析（圖3A）。

酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)（ELISA）結(jié)果顯示，AL/39組和Epigraph組均對三種不同的Epigraph蛋白產(chǎn)生了特異性血清免疫球蛋白G（IgG）抗體反應(yīng)。第二次免疫后，Epigraph疫苗顯著提高了HA特異性IgG抗體的水平。第二次免疫后，Epigraph疫苗顯著提高了HA特異性IgG抗體的水平。值得注意的是，mi3組也引發(fā)了適度的IgG抗體反應(yīng)。

為進(jìn)一步評估免疫過程中IgG抗體反應(yīng)的類型，我們分析了IgG亞型。結(jié)果顯示，Epigraph免疫小鼠的HA特異性IgG1和IgG2a滴度顯著升高，表明誘導(dǎo)了Th1和Th2免疫反應(yīng)。此外，在整個(gè)免疫過程中，IgG1/IgG2a比值始終大于1，表明以Th2介導(dǎo)的抗體反應(yīng)為主（圖3B?D）。當(dāng)針對不同H9N2毒株的HA蛋白進(jìn)行評估時(shí)，與AL/39疫苗相比，Epigraph疫苗在加強(qiáng)免疫后誘導(dǎo)了顯著更高的HA特異性IgG反應(yīng)（圖3E），表明Epigraph免疫在小鼠中誘導(dǎo)了更強(qiáng)的體液免疫反應(yīng)。

Robust Cross-Reactive Antibody Response against H9N2 AIVs

為評估交叉反應(yīng)抗體應(yīng)答水平，每組6只BALB/c小鼠分別接種上述Epigraph疫苗、AL/39疫苗或mi3納米顆粒制劑。

在初次免疫（圖4B）和加強(qiáng)免疫（圖4C）兩周后，采集小鼠血清樣本。采用17株具有代表性的H9N2病毒株（圖4A）進(jìn)行血凝抑制試驗(yàn)。根據(jù)世界衛(wèi)生組織及歐洲藥品委員會標(biāo)準(zhǔn)，HI效價(jià)≥1:40被視為具有保護(hù)效力，該閾值與感染風(fēng)險(xiǎn)降低約50%具有相關(guān)性（文獻(xiàn)33-35）。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明，Epigraph疫苗能誘導(dǎo)強(qiáng)烈的交叉反應(yīng)抗體應(yīng)答：初次免疫和加強(qiáng)免疫后，分別有52.9%（9/17）和82.4%（14/17）的毒株HI效價(jià)≥40。

相比之下，AL/39 滅活疫苗在初次免疫和加強(qiáng)免疫后，分別有 41.2%（7/17）和 64.7%（11/17）的病毒株顯示出 HI 滴度≥40。值得注意的是，Epigraph 疫苗在加強(qiáng)免疫后對目前流行的 h9.4 系 H9N2 病毒誘導(dǎo)了 100%的保護(hù)性 HI 抗體反應(yīng)。 
對于目前流行的 H9N2 病毒 h9.4.2.5 譜系，Epigraph 疫苗誘導(dǎo)的 HI 抗體滴度顯著高于 AL/39 疫苗，但安徽/2018 株和湖南/2018 株除外，這兩株與 AL/39 疫苗成分一致或相似。熱圖直觀地展示了 Epigraph 疫苗和 AL/39 疫苗之間廣譜 HI 滴度的差異（圖 4B、C），突出了 Epigraph 疫苗所引發(fā)的更優(yōu)的交叉反應(yīng)性抗體應(yīng)答。

Immunization with the Epigraph Vaccine Protects Mice against Lethal Challenge of Heterologous H9N2 AIVs

為評估Epigraph疫苗對H9N2亞型病毒感染的防護(hù)效力，本研究采用三株代表性毒株（江蘇/2002、山東/2019和湖南/2018）對免疫小鼠進(jìn)行攻毒實(shí)驗(yàn)，其中江蘇/2002株屬h9.4.2.1分支，山東/2019和湖南/2018株屬h9.4.2.5分支，攻毒劑量為半數(shù)致死量（LD50）的10倍。攻毒后連續(xù)14天監(jiān)測感染臨床癥狀及體重變化，當(dāng)小鼠體重下降≥25%初始體重時(shí)實(shí)施人道（圖5A）。如圖5B-D所示，Epigraph疫苗與AL/39疫苗免疫組小鼠僅出現(xiàn)輕微體重下降，且迅速恢復(fù)至基線水平，全部存活至實(shí)驗(yàn)結(jié)束，防護(hù)效力達(dá)100%。在江蘇/2002和山東/2019毒株感染組中，AL/39疫苗組小鼠在感染后6天內(nèi)呈現(xiàn)輕度被毛蓬松及活動量減少，而Epigraph疫苗組小鼠基本未出現(xiàn)被毛蓬松、嗜睡等臨床癥狀。相比之下，PBS或mi3免疫組小鼠表現(xiàn)出顯著體重下降、被毛雜亂、顫抖、食欲減退等癥狀，最終全部死亡或達(dá)到人道干預(yù)終點(diǎn)。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)證實(shí)Epigraph疫苗可誘導(dǎo)針對異源H9N2毒株致死性感染的交叉保護(hù)作用。

Immunization with the Epigraph Vaccine Reduces Lung Viral Titers and Pathological Inflammatory after H9N2 Challenge in Mice.

為進(jìn)一步評估Epigraph疫苗的保護(hù)效力，研究團(tuán)隊(duì)于感染后3天（圖5B-D）檢測了肺部病毒載量。結(jié)果表明，與PBS組和mi3組相比，Epigraph疫苗顯著降低了肺部病毒滴度。在接種Epigraph疫苗并感染江蘇/2002毒株的實(shí)驗(yàn)組中，感染后3天未檢測到肺部病毒脫落，其肺部病毒清除優(yōu)于AL/39疫苗組。對于山東/2019毒株感染組，Epigraph疫苗組的病毒滴度雖略低于AL/39疫苗組，但差異未達(dá)到統(tǒng)計(jì)學(xué)顯著性。而在湖南/2018毒株感染組中，Epigraph疫苗的肺部病毒清除效果不及AL/39疫苗組。這一現(xiàn)象可能源于AL/39疫苗組分與湖南/2018毒株病毒具有的序列同源性，其血凝素（HA）蛋白的氨基酸序列相似度達(dá)96.75%（附表S2）。

為評估肺部病理學(xué)變化，對感染后3天（dpi）采集的肺組織切片進(jìn)行蘇木精-伊紅（HE）染色。如圖6A所示，所有PBS組和mi3組小鼠肺組織均呈現(xiàn)嚴(yán)重的細(xì)支氣管炎和支氣管肺炎病理特征，具體表現(xiàn)為肺泡間隔增厚、水腫、間質(zhì)組織炎性細(xì)胞浸潤及終末肺泡結(jié)構(gòu)改變。相比之下，Epigraph疫苗免疫組小鼠僅出現(xiàn)輕微肺損傷，表現(xiàn)為可忽略或輕度細(xì)胞浸潤及較輕微炎癥反應(yīng)。與AL/39疫苗組相比，Epigraph疫苗組肺組織病理學(xué)評分顯著降低。肺組織切片的組織病理學(xué)評估證實(shí)，Epigraph疫苗可提供強(qiáng)效保護(hù)作用（圖6B）。上述結(jié)果表明，Epigraph疫苗對H9N2病毒攻擊具有高度有效的保護(hù)效力。

Partial Protection against H9N2 Challenge Conferred by Passive Serum Transfer in Mice

為評估Epigraph疫苗誘導(dǎo)抗體的保護(hù)效力，我們進(jìn)行了被動血清轉(zhuǎn)移實(shí)驗(yàn)。實(shí)驗(yàn)組小鼠接種兩劑疫苗后，通過終末采血法收集血清。隨后通過腹腔注射將收集的血清轉(zhuǎn)移至未免疫小鼠體內(nèi)（圖7A）。血清轉(zhuǎn)移24小時(shí)后，受體小鼠表現(xiàn)出與供體小鼠相當(dāng)?shù)腎gG抗體滴度，證實(shí)抗體轉(zhuǎn)移成功（圖7B）。隨后用10倍半數(shù)致死劑量的江蘇/2002病毒株攻毒受體小鼠，并監(jiān)測其體重變化與存活率（圖7C、D）。接受mi3或PBS組血清的小鼠均在7日內(nèi)死亡。Epigraph疫苗組和AL/39疫苗組血清受體小鼠雖出現(xiàn)顯著體重下降，但部分個(gè)體在嚴(yán)重失重后逐漸恢復(fù)。 

最終Epigraph疫苗組供體血清受體存活率為33.3%（6例中2例存活），AL/39疫苗組達(dá)66.6%（6例中4例存活）。上述數(shù)據(jù)表明，Epigraph疫苗誘導(dǎo)的血清抗體雖能發(fā)揮抗病毒攻擊作用，但尚不足以提供保護(hù)。要實(shí)現(xiàn)該疫苗的全面保護(hù)效力，可能需要細(xì)胞免疫等其他免疫機(jī)制的關(guān)鍵協(xié)同作用。Immunization with the Epigraph Vaccine Elicits Robust Antigen-Specific T Cell Responses in Mice. T細(xì)胞在流感病毒感染期間的病毒清除過程中起著關(guān)鍵作用[36,37]。鑒于被動血清轉(zhuǎn)移實(shí)驗(yàn)中血清IgG的保護(hù)效果有限，我們推測Epigraph疫苗所賦予的保護(hù)作用可能部分由細(xì)胞免疫反應(yīng)介導(dǎo)。為評估Epigraph疫苗誘導(dǎo)的抗原特異性T細(xì)胞反應(yīng)，我們在加強(qiáng)免疫兩周后分離了小鼠脾細(xì)胞（圖8A）。采用流式細(xì)胞術(shù)定量分析了CD3+CD4+T細(xì)胞與CD3+CD8+T細(xì)胞的細(xì)胞因子分泌情況，具體門控策略如圖S3所示。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明，與AL/39疫苗相比，Epigraph疫苗顯著提高了分泌IL-4、IFN-γ和TNF-α的CD3+CD4+T細(xì)胞的數(shù)量及比例。CD3+CD4+T細(xì)胞同時(shí)增加IL-4與IFN-γ分泌的現(xiàn)象表明，該疫苗可同時(shí)引發(fā)Th1和Th2免疫應(yīng)答（圖8B,C）。鑒于細(xì)胞毒性T淋巴細(xì)胞（CTLs）對流感病毒清除至關(guān)重要[38]，我們還分析了CD3+CD8+T細(xì)胞的細(xì)胞因子分泌情況。數(shù)據(jù)顯示Epigraph疫苗顯著增強(qiáng)了CD3+CD8+T細(xì)胞的活化，表現(xiàn)為分泌IFN-γ和TNF-α的CD8+T細(xì)胞數(shù)量及比例均大幅提升（圖8D,E）。這些研究結(jié)果證實(shí)，Epigraph疫苗在小鼠體內(nèi)能誘導(dǎo)強(qiáng)烈的免疫原性和強(qiáng)有力的細(xì)胞免疫應(yīng)答。

我們進(jìn)一步研究了T細(xì)胞免疫應(yīng)答的交叉反應(yīng)性。在加強(qiáng)免疫兩周后分離小鼠脾細(xì)胞，分別采用江蘇/2002、山東/2019和湖南/2018株的純化流感病毒HA1蛋白進(jìn)行刺激。通過酶聯(lián)免疫斑點(diǎn)(ELISpot)實(shí)驗(yàn)檢測T細(xì)胞產(chǎn)生的干擾素-γ和白細(xì)胞介素-4。如圖9A、B所示，Epigraph疫苗在小鼠接種后能針對所有三株病毒誘導(dǎo)高水平的HA蛋白特異性細(xì)胞免疫應(yīng)答。

該疫苗組分泌IFN-γ/IL-4的細(xì)胞數(shù)量顯著高于PBS組、mi3組及AL/39疫苗組，與流式細(xì)胞術(shù)結(jié)果一致。值得注意的是，盡管Epigraph疫苗對江蘇/2002株誘導(dǎo)的抗體應(yīng)答有限（血凝抑制效價(jià)檢測結(jié)果），但仍能引發(fā)顯著的T細(xì)胞應(yīng)答。結(jié)合被動血清轉(zhuǎn)移實(shí)驗(yàn)，這些發(fā)現(xiàn)表明Epigraph疫苗對江蘇/2002株致死性攻擊的保護(hù)作用主要由細(xì)胞免疫介導(dǎo)。

結(jié)合被動血清轉(zhuǎn)移實(shí)驗(yàn)，這些發(fā)現(xiàn)表明Epigraph疫苗對江蘇/2002株致死性攻擊的保護(hù)作用主要由細(xì)胞免疫介導(dǎo)。此外，與AL/39疫苗相比，Epigraph疫苗對湖南/2018株誘導(dǎo)的T細(xì)胞應(yīng)答更為強(qiáng)烈。然而根據(jù)血凝抑制效價(jià)檢測，Epigraph疫苗誘導(dǎo)的可檢測抗體應(yīng)答水平相當(dāng)或相對較弱。這些結(jié)果表明Epigraph疫苗能在BALB/c小鼠體內(nèi)誘導(dǎo)強(qiáng)烈的抗原特異性細(xì)胞免疫應(yīng)答，彰顯其作為H9N2亞型病毒候選疫苗的潛力。

討論

近年來，新型病毒（AIVs）已成為對動物和人類構(gòu)成重大威脅的病原體。其中，H9N2亞型因其在家禽中的廣泛流行及其直接從家禽傳播至人類的能力而尤為令人關(guān)注。此外，H9N2已被證實(shí)能夠促進(jìn)新型重組毒株的出現(xiàn)，這些毒株可感染人類。每年二月，世界衛(wèi)生組織（WHO）預(yù)測北半球即將到來的流感季節(jié)中最可能流行的流感毒株，并將此信息提供給疫苗生產(chǎn)商。然而，疫苗的生產(chǎn)和分發(fā)在毒株預(yù)測后需要約6至8個(gè)月。這一漫長的過程為病毒通過抗原漂移進(jìn)化提供了時(shí)間，可能導(dǎo)致變異毒株與所選疫苗毒株匹配不佳。由于流感病毒頻繁的抗原漂移，當(dāng)前流感疫苗的保護(hù)譜仍然有限。因此，亟需改進(jìn)傳統(tǒng)流感疫苗平臺并開發(fā)通用流感疫苗。

選擇合適的抗原表位對于開發(fā)通用流感病毒疫苗至關(guān)重要。在本研究中，我們評估了一種表位優(yōu)化的通用納米顆粒疫苗。我們利用Epigraph疫苗設(shè)計(jì)算法設(shè)計(jì)了廣泛交叉反應(yīng)的H9N2 HA抗原，以不同病原體群體中的潛在表位覆蓋?；诩{米顆粒的抗原呈遞系統(tǒng)在我們的疫苗設(shè)計(jì)中也至關(guān)重要。近年來，單個(gè)顆粒上展示多種抗原的納米顆粒已成為一種有前景的疫苗平臺，顯著增強(qiáng)了對抗原的免疫反應(yīng)。在我們的系統(tǒng)中，Epigraph疫苗通過mi3納米顆粒平臺遞送，HA抗原展示在mi3表面，類似于天然流感病毒顆粒。適當(dāng)大小的納米顆粒被樹突狀細(xì)胞（DCs）和巨噬細(xì)胞有效捕獲和呈遞，從而觸發(fā)強(qiáng)烈的抗原特異性免疫反應(yīng)。盡管缺乏NA抗原，納米顆粒表面展示的多個(gè)HA優(yōu)勢抗原相較于傳統(tǒng)滅活全病毒疫苗具有優(yōu)勢。未來的疫苗評估策略將考慮納入H9NX亞型病毒。

血凝抑制（HI）滴度是評估流感疫苗效力的標(biāo)準(zhǔn)指標(biāo)。通常認(rèn)為HI滴度至少為1:40時(shí)，對應(yīng)人類流感感染風(fēng)險(xiǎn)降低50%，并常被用作“閾值"保護(hù)滴度。較高的HI滴度通常與更強(qiáng)的保護(hù)作用相關(guān)。在本研究中，我們證實(shí)Epigraph疫苗誘導(dǎo)了針對17種H9N2 IAV毒株中14種的強(qiáng)烈交叉反應(yīng)HI抗體滴度。值得注意的是，單劑Epigraph疫苗誘導(dǎo)的針對安徽/2018毒株的抗體滴度與AL/39疫苗相當(dāng)。此外，Epigraph疫苗在當(dāng)前流行的H9N2 h9.4.2.5譜系中，針對其他三種人類H9N2毒株（湖北/2019、柬埔寨/2021和香港/2014）誘導(dǎo)的HI抗體滴度顯著高于AL/39疫苗。然而，Epigraph疫苗和AL/39疫苗均未誘導(dǎo)針對歷史毒株（h9.1-h9.3譜系）的HI抗體反應(yīng)。這可能是由于在H9N2病毒進(jìn)化過程中，歷史毒株不再流行，導(dǎo)致其表位在整體數(shù)據(jù)集中罕見。雖然增加Epigraph抗原數(shù)量可能覆蓋這些罕見表位，但這種方法會稀釋關(guān)鍵抗原決定簇。鑒于歷史毒株重新出現(xiàn)的可能性較低，Epigraph疫苗在提供針對當(dāng)前流行毒株的廣譜保護(hù)以及有效應(yīng)對H9N2抗原漂移導(dǎo)致的疫苗不匹配問題方面仍然有效。

由于HI滴度長期以來一直是流感疫苗批準(zhǔn)的主要依據(jù)，大多數(shù)商業(yè)流感疫苗（如滅活疫苗）旨在誘導(dǎo)強(qiáng)烈的體液免疫反應(yīng)。然而，針對流感病毒的保護(hù)性免疫依賴于體液和細(xì)胞免疫反應(yīng)的密切合作。除了抗體反應(yīng)外，T細(xì)胞在流感防御中起著關(guān)鍵作用。有研究表明，T細(xì)胞反應(yīng)在老年人群中與疫苗保護(hù)的相關(guān)性更好。然而，傳統(tǒng)的商業(yè)滅活流感疫苗通常無法誘導(dǎo)強(qiáng)烈的T細(xì)胞反應(yīng)。這一局限性被我們的Epigraph疫苗所解決，其通過T細(xì)胞表位覆蓋來賦予更強(qiáng)大的T細(xì)胞免疫反應(yīng)。在本研究中，被動血清轉(zhuǎn)移實(shí)驗(yàn)顯示，Epigraph疫苗誘導(dǎo)的體液免疫反應(yīng)提供的保護(hù)有限，表明T細(xì)胞反應(yīng)在病毒清除中的關(guān)鍵作用。流式細(xì)胞術(shù)和ELISpot結(jié)果證實(shí)，Epigraph疫苗誘導(dǎo)了強(qiáng)烈的抗原特異性細(xì)胞免疫和針對多種H9N2毒株的交叉反應(yīng)T細(xì)胞反應(yīng)。與AL/39疫苗相比，Epigraph疫苗免疫小鼠表現(xiàn)出CD4+和CD8+ T淋巴細(xì)胞分泌的IFN-γ增強(qiáng)。CD4+ T細(xì)胞促進(jìn)B細(xì)胞反應(yīng)并推動淋巴結(jié)和脾臟中病毒特異性CD8+ T細(xì)胞的擴(kuò)增。CD8+ T細(xì)胞直接清除感染細(xì)胞并抑制病毒復(fù)制。值得注意的是，盡管Epigraph疫苗誘導(dǎo)的針對江蘇/2002毒株的HI抗體滴度較低，但其通過強(qiáng)烈的T細(xì)胞激活提供了保護(hù)。此外，一部分激活的T細(xì)胞分化為能夠賦予長期免疫的長壽命記憶T細(xì)胞。這些記憶T細(xì)胞維持抗原特異性T細(xì)胞受體（TCRs）的持續(xù)表達(dá)，使其能夠迅速識別同源抗原并誘導(dǎo)強(qiáng)烈的二次免疫反應(yīng)。鑒于此，Epigraph疫苗可能比傳統(tǒng)疫苗提供更的長期保護(hù)效力。然而，Epigraph疫苗的持久性仍需進(jìn)一步系統(tǒng)研究。

值得注意的是，由于疫苗類型不同，Epigraph疫苗與AL/39疫苗之間的直接比較并不等同。盡管如此，我們的初步結(jié)果突顯了Epigraph疫苗作為通用疫苗候選者的潛力。鑒于其與當(dāng)前流行的H9N2譜系毒株的交叉反應(yīng)性，Epigraph疫苗在緩解年度毒株預(yù)測、生產(chǎn)和免疫挑戰(zhàn)方面顯示出前景。此外，作為一種體外偶聯(lián)蛋白納米顆粒，Epigraph疫苗可使用標(biāo)準(zhǔn)真核和原核蛋白表達(dá)系統(tǒng)快速生產(chǎn)。這使得疫苗能夠高效供應(yīng)和儲備，便于在疫情爆發(fā)前迅速開展全球疫苗接種活動。
 

材料和方法

Cells, Viruses, and Mice。細(xì)胞、病毒與小鼠。HEK293F細(xì)胞購自ATCC，并在37°C、85%濕度、5% CO2、120 rpm的搖床培養(yǎng)箱中使用SMM 293-TII表達(dá)培養(yǎng)基進(jìn)行培養(yǎng)。

表位圖抗原的設(shè)計(jì)與表征。首先，從GISAID公共數(shù)據(jù)庫中下載了1966年至2022年11月29日期間在中國分離的H9N2（AIVs）的11,367條HA氨基酸完整編碼區(qū)序列。去除重復(fù)序列和低質(zhì)量序列后，剩余的6,445條序列使用MAFFT軟件（版本7.505）進(jìn)行比對。提取HA第1-337位（HA1，HA的球狀頭部結(jié)構(gòu)域）的序列并上傳至Epigraph疫苗設(shè)計(jì)器。運(yùn)行參數(shù)設(shè)置為：表位長度：9，疫苗池中序列數(shù)量：3。最終生成了三條HA表位圖序列（Epigraph0、Epigraph1和Epigraph2）。本研究中使用的表位圖及其他蛋白質(zhì)序列見表S3。將這6445條HA1序列與三條表位圖序列合并，使用MAFFT對每個(gè)基因片段進(jìn)行多重序列比對。使用IQ-Tree2（版本2.2.0.3）在Linux系統(tǒng)下對處理后的比對結(jié)果進(jìn)行最大似然法系統(tǒng)發(fā)育樹分析，參數(shù)設(shè)置為-bb 1000-bnni -m MFP。系統(tǒng)發(fā)育樹使用FigTree軟件（版本1.4.3）進(jìn)行圖形化展示。

質(zhì)粒構(gòu)建。表位圖HA基因分別針對人類細(xì)胞進(jìn)行密碼子優(yōu)化，并由生工生物合成。SpyTag和六組氨酸標(biāo)簽通過甘氨酸-甘氨酸-甘氨酸-絲氨酸（GGGS）連接子依次融合在表位圖HA的C端，并進(jìn)一步克隆至哺乳動物表達(dá)載體pCAGGS中。SpyCatcher-mi3通過柔性連接子GGS（4）和GGGS連接子分別將SpyCatcher和六組氨酸標(biāo)簽融合至mi3的N端和C端獲得。隨后將該構(gòu)建體插入大腸桿菌表達(dá)載體pET28a中。

蛋白質(zhì)表達(dá)與純化。表位圖-SpyTag使用真核表達(dá)系統(tǒng)進(jìn)行表達(dá)。簡而言之，HEK293F細(xì)胞在SMM 293-TII表達(dá)培養(yǎng)基（M293TII-1，義翹神州）中于37°C、85%濕度、5% CO2、120 rpm的搖床中培養(yǎng)。當(dāng)細(xì)胞密度達(dá)到1.2 × 10^6 cells/mL時(shí)，以1:2的比例將質(zhì)粒與聚乙烯亞胺試劑（23966-100，Polysciences）進(jìn)行瞬時(shí)轉(zhuǎn)染。孵育5天后，于8000 rpm、4°C離心1小時(shí)去除細(xì)胞。收集上清液并通過0.22 μm濾膜（SLGP033RB，默克密理博）過濾。過濾后的上清液使用HyPur T Ni-TED 6FF（His-Tag）預(yù)裝重力柱（C600801，生工生物）進(jìn)行純化。目標(biāo)蛋白使用含有50 mM HEPES，pH 7.4）、300 mM咪唑和300 mM NaCl的緩沖液洗脫。洗脫液濃縮后使用預(yù)先用PBS平衡的Superose 6 Increase 10/300 GL柱（Cytiva）進(jìn)行尺寸排阻色譜進(jìn)一步純化。蛋白質(zhì)純度和濃度通過十二烷基*-聚丙烯酰胺凝膠電泳（SDS-PAGE）和BCA蛋白質(zhì)定量試劑盒（E112-02，Vazyme）測定。

SpyCatcher-mi3納米顆粒（NPs）使用原核表達(dá)系統(tǒng)表達(dá)，方法如前所述。簡而言之，編碼SpyCatcher-mi3的pET28a表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)化至大腸桿菌BL21(DE3)細(xì)胞中，并在含有卡那霉素的LB固體瓊脂平板上于37°C培養(yǎng)16小時(shí)。挑取單菌落接種至10 mL含有卡那霉素的LB培養(yǎng)基中，于37°C、200 rpm搖床中培養(yǎng)16小時(shí)。將10 mL培養(yǎng)物全部加入1 L含有卡那霉素的LB培養(yǎng)基中，培養(yǎng)至OD600為0.8。使用0.4 mM異丙基-β-D-硫代半乳糖苷（IPTG）于16°C、150 rpm誘導(dǎo)蛋白表達(dá)20小時(shí)。為純化SpyCatcher-mi3 NPs，細(xì)胞于4000 × g離心10分鐘收集。大腸桿菌細(xì)胞重懸于100 mL裂解緩沖液（50 mM HEPES、300 mM NaCl、5 mM MgCl2、20 mM咪唑、50 μg/mL脫氧核糖核酸酶和1 mM苯，pH 8.0）中，并使用高壓細(xì)胞破碎儀（Union-Biotech）于600 bar裂解。細(xì)胞碎片于30,000 × g、4°C離心1小時(shí)去除。上清液通過0.22 μm濾膜過濾，上樣至HyPur T Ni-NTA 6FF（His-Tag）預(yù)裝重力柱（C600791，生工生物），并用洗滌緩沖液（50 mM HEPES、300 mM NaCl、300 mM咪唑、0.75% CHAPS，pH 8.0）洗滌。進(jìn)一步使用預(yù)先用緩沖液（50 mM HEPES、300 mM NaCl，pH 8.0）平衡的Superose 6 Increase 10/300 GL尺寸排阻色譜柱進(jìn)行純化。所有純化蛋白均按照制造商說明使用ToxinEraser內(nèi)毒素去除試劑盒（L00338，金唯智）去除內(nèi)毒素。殘留內(nèi)毒素使用ToxinSensor凝膠凝塊內(nèi)毒素檢測試劑盒（L00351，金唯智）檢測。

表位圖疫苗的制備。為構(gòu)建表位圖-mi3 NPs，將15 μM SpyCatcher-mi3與60 μM表位圖-SpyTag（mi3 NPs與表位圖抗原比例為1:4）于4°C孵育過夜進(jìn)行體外偶聯(lián)反應(yīng)。隨后將混合物高速離心10分鐘去除聚集體。進(jìn)一步使用預(yù)先用50 mM HEPES（pH 7.4）和300 mM NaCl平衡的Superose 6 Increase 10/300 GL柱進(jìn)行尺寸排阻色譜純化。收集目標(biāo)蛋白，濃縮后于-80°C保存。表位圖疫苗由三種納米顆粒Epigraph0-mi3、Epigraph1-mi3和Epigraph2-mi3等摩爾比混合而成。

SDS-PAGE。SDS-PAGE分析使用10%凝膠進(jìn)行，凝膠按照PAGE凝膠快速制備試劑盒（PG112，翌圣生物）說明制備。上樣后，凝膠在SDS電泳緩沖液中于150 V運(yùn)行50分鐘，隨后用考馬斯亮藍(lán)染色。染色1小時(shí)后，用Milli-Q水脫色，并使用ChemiDoc XRS成像儀（Bio-Rad）成像。

負(fù)染透射電子顯微鏡（TEM）。負(fù)染透射電子顯微鏡分析將新鮮純化的蛋白以約50 nM濃度置于輝光放電的碳膜包被的300目銅網(wǎng)上。吸附1分鐘后，用2.0%磷鎢酸（PTA）染色1分鐘并洗滌三次。使用Talos L120C透射電子顯微鏡（賽默飛世爾科技）進(jìn)行成像。

動態(tài)光散射（DLS）。DLS分析使用Zetasizer Nano分析儀（馬爾文帕納科）表征mi3和表位圖-mi3 NPs的尺寸和均一性。簡而言之，純化蛋白于4°C高速離心10分鐘去除聚集體，取200 μL上樣至一次性尺寸比色皿中。使用Zetasizer Nano分析儀測定純化蛋白的顆粒分布，每個(gè)樣品分析三次。使用GraphPad Prism 9軟件進(jìn)一步比較mi3和表位圖-mi3 NPs的數(shù)量分布。

差示掃描熒光法（DSF）。使用PSA-16儀器（北京佰司特科技）評估目標(biāo)蛋白的熱穩(wěn)定性。樣品稀釋至約1 mg/mL，取20 μL稀釋樣品上樣至石英玻璃管（Cat# LG-002，京佰司特科技）。按照制造商說明進(jìn)行操作。簡而言之，以1°C/min的升溫速率從30°C線性掃描至100°C，并在330 nm和350 nm波長下測量蛋白熒光強(qiáng)度。熱轉(zhuǎn)變中點(diǎn)（Tm）由F350/F330熒光比曲線的斜率確定。每個(gè)樣品測量三次。使用GraphPad Prism 9軟件繪制一階導(dǎo)數(shù)數(shù)據(jù)。

血凝（HA）和血凝抑制（HI）試驗(yàn)。對于HA試驗(yàn)，在96孔微孔板中制備測試樣品的2倍系列稀釋液，每孔混合50 μL磷酸鹽緩沖液（PBS）和50 μL樣品。隨后每孔加入50 μL 1%雞紅細(xì)胞，于室溫孵育30分鐘后記錄結(jié)果。血凝滴度定義為誘導(dǎo)紅細(xì)胞凝集的樣品最高稀釋度。采用血凝抑制試驗(yàn)（HI assay）測定免疫小鼠血清樣本中的抗體效價(jià)，具體操作參照先前文獻(xiàn)所述。簡言之，將血清樣本與3倍體積的受體破壞酶（RDE，Denka Seiken，貨號340122）在37°C下孵育18小時(shí)，以消除非特異性抑制。隨后，將混合物在56°C下孵育30分鐘以滅活RDE，并加入6倍體積的PBS，使血清最終稀釋至1:10。將血清與雞紅細(xì)胞按20:1的比例在4°C下孵育1小時(shí)，離心去除紅細(xì)胞以消除非特異性吸附。在96孔微量滴定板中，用PBS對血清進(jìn)行2倍系列稀釋，每孔加入25 μL血清。隨后，每孔加入25 μL含有4個(gè)血凝單位（HAU）的H9N2病毒懸液。將板在室溫下孵育1小時(shí)，然后每孔加入50 μL 1%雞紅細(xì)胞懸液，繼續(xù)在室溫下孵育30分鐘。抑制血凝的最高血清稀釋度即為最終的血凝抑制效價(jià)。

ELISA 酶聯(lián)免疫吸附測定（ELISA）。文獻(xiàn)64所述方法進(jìn)行ELISA結(jié)合實(shí)驗(yàn)，以評估純化的Epigraph蛋白或Epigraph-mi3納米顆粒與市售H9N2血凝素（HA）特異性抗體的結(jié)合能力。簡言之，將純化靶蛋白以1 μg/mL濃度包被于ELISA板（每孔0.1 mL），4℃孵育過夜。以PBST洗滌三次后，加入0.2 mL含1%牛血清白蛋白（Sangon Biotech，A600332）的PBST溶液，37℃封閉2-3小時(shí)，再次PBST洗滌三次。隨后加入起始濃度為4 μg/mL的H9N2 HA兔源抗體（Sino Biological，11229-RP02）進(jìn)行1:4梯度稀釋孵育1小時(shí)，PBST洗滌五次后，每孔加入0.1 mL辣根過氧化物酶（HRP）標(biāo)記的羊抗兔IgG抗體（Abbkine，A21020；1:10,000稀釋），37℃孵育1小時(shí)。經(jīng)五次洗滌后，加入0.1 mL 3,3,5,5′-四甲基聯(lián)苯胺（TMB）顯色底物（Solarbio，PR1200），以0.1 mL H?SO?終止反應(yīng)后測定450 nm吸光度。  小鼠血清抗體檢測采用相同包被、孵育及顯色流程，分別使用HRP標(biāo)記的羊抗鼠IgG（ProteinTech，SA00001?1）、IgG1（ProteinTech，SA00012?1）或IgG2a（ProteinTech，SA00012?2）抗體（1:10,000稀釋）作為二抗檢測血清樣本中相應(yīng)抗體水平。  

小鼠免疫與組織采集。免疫前將Alum佐劑（77161，Thermo Fisher Scientific）以1:1體積比加入免疫原溶液，孵育30分鐘使抗原有效吸附于佐劑顆粒表面。雌性BALB/c小鼠（6-8周齡，n=6）分別經(jīng)肌肉注射接種10 μg Epigraph疫苗（含Epigraph-mi3納米顆粒各3.33 μg，總量10 μg）或10 μg AL/39疫苗。初次免疫3周后加強(qiáng)免疫。陰性對照組使用4.55 μg mi3（與Epigraph-mi3納米顆粒等摩爾量）。每次免疫以雙股四頭肌兩點(diǎn)注射（每點(diǎn)50 μL）方式實(shí)施。免疫后兩周經(jīng)眼眶靜脈叢采血收集血清用于免疫效力評估。末次免疫兩周后取脾臟樣本分析細(xì)胞免疫應(yīng)答。

小鼠流感攻毒實(shí)驗(yàn)。采用Reed-Muench法測定各病毒株的50%小鼠致死劑量（LD??）。雌性BALB/c小鼠（6-8周齡，n=10）接種AL/39疫苗、Epigraph疫苗或mi3安慰劑。加強(qiáng)免疫3周后，麻醉小鼠，鼻內(nèi)接種10 LD??劑量的小鼠適應(yīng)株A/Chicken/Jiangsu/7/2002、A/chicken/Shandong/005/2019及A/chicken/Hunan/06.22_YYGK5T3-OC/2018（25 μL）。攻毒后第3天處死各組4只小鼠取肺組織，通過TCID??和qPCR測定肺內(nèi)病毒載量。部分肺葉經(jīng)4%中性緩沖福爾馬林固定、石蠟包埋切片后，進(jìn)行蘇木精-伊紅（HE）染色分析。剩余6只小鼠監(jiān)測2周內(nèi)體重變化，當(dāng)體重下降至初始值25%時(shí)實(shí)施。

血清被動轉(zhuǎn)移實(shí)驗(yàn)。供體BALB/c小鼠按上述方案免疫，加強(qiáng)免疫3周后收集血清檢測IgG抗體?；旌涎褰?jīng)56℃孵育30分鐘滅活后，以每只200 μL劑量腹腔注射至受體小鼠。24小時(shí)后經(jīng)眼眶采血測定IgG滴度，隨后以10 LD??江蘇/2002毒株攻毒，每日監(jiān)測體重與存活率至14天。  

細(xì)胞內(nèi)細(xì)胞因子染色與流式細(xì)胞術(shù)。采用流式細(xì)胞術(shù)評估免疫小鼠脾臟抗原反應(yīng)性T細(xì)胞。裂解紅細(xì)胞后的脾細(xì)胞以15 μg/mL Epigraph0/1/2蛋白混合物刺激16小時(shí)，加入布雷菲德菌素A繼續(xù)孵育10小時(shí)。依次進(jìn)行Fixable Viability Stain 510（564406，BD Biosciences）活力染色、Fc受體封閉（S0B0599，STARTER），以及FITC倉鼠抗鼠CD3ε（553061）、PerCP-Cy5.5大鼠抗鼠CD8α（551162）、BV421大鼠抗鼠CD4（562891）表面標(biāo)記（4℃避光25分鐘）。固定透化后，采用PE標(biāo)記大鼠抗鼠IL-4（554435）、PE-Cy7標(biāo)記大鼠抗鼠IFN-γ（557649）、APC標(biāo)記大鼠抗鼠TNF（554420）進(jìn)行胞內(nèi)染色（4℃避光30分鐘），通過BD LSRFortessa X-20流式細(xì)胞儀檢測，F(xiàn)lowJo v10.8.1軟件分析細(xì)胞因子特異性T細(xì)胞比例。

酶聯(lián)免疫斑點(diǎn)（ELISpot）檢測。分離的脾細(xì)胞以1×10?/孔密度與1 μg HA1蛋白（江蘇/2002、山東/005/2019或湖南/06.22_YYGK5T3-OC/2018株）在5% CO?、37℃條件下共孵育24小時(shí)。依次加入生物素化抗IFN-γ/IL-4抗體（37℃ 1小時(shí)）及酶標(biāo)鏈霉親和素（37℃ 1小時(shí)）。陽性對照組加入佛波酯/離子霉素刺激，陰性對照組不處理。采用ImmunoSpot Analyzers自動計(jì)數(shù)儀檢測斑點(diǎn)形成單位（SFU）。  

統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。組間比較采用雙尾t檢驗(yàn)，多組比較采用單因素方差分析（Tukey多重檢驗(yàn)）。所有分析通過GraphPad Prism 9軟件完成，顯著性閾值設(shè)定為p<0.05。具體統(tǒng)計(jì)方法見圖表注釋。
 

差示掃描熒光法（DSF）。使用PSA-16儀器（北京佰司特科技）評估目標(biāo)蛋白的熱穩(wěn)定性。樣品稀釋至約1 mg/mL，取20 μL稀釋樣品上樣至石英玻璃管（Cat# LG-002，京佰司特科技）。按照制造商說明進(jìn)行操作。簡而言之，以1°C/min的升溫速率從30°C線性掃描至100°C，并在330 nm和350 nm波長下測量蛋白熒光強(qiáng)度。熱變性中點(diǎn)（Tm）由F350/F330熒光比曲線的斜率確定。每個(gè)樣品測量三次。使用GraphPad Prism 9軟件繪制一階導(dǎo)數(shù)數(shù)據(jù)。

蛋白穩(wěn)定性分析儀PSA-16

北京佰司特科技有限責(zé)任公司于2023年推出了自主研發(fā)的第一款國產(chǎn)的蛋白穩(wěn)定性分析儀PSA-16。

PSA-16的性能和參數(shù)達(dá)到進(jìn)口設(shè)備的水平，價(jià)格卻遠(yuǎn)低于進(jìn)口產(chǎn)品，彌補(bǔ)了目前國產(chǎn)自主設(shè)備在蛋白穩(wěn)定性研究分析領(lǐng)域的空白。

主要參數(shù)★ 測定參數(shù)：Tm、Cm、ΔG等；

★ 樣品通量：16個(gè)；

★ 樣品體積：≤20 uL；

★ 濃度范圍：0.01-200 mg/ml；

★ 溫控范圍：15-110度；

★ 變溫速度：0.1-15度/分鐘；

★ Tm重復(fù)性：CV小于1%；

★ 耗材參數(shù)：一次性，無需清洗；

★ 八聯(lián)排設(shè)計(jì)，適配多通道移液器；

多功能蛋白穩(wěn)定性分析儀PSA-16基于內(nèi)源差示掃描熒光（ifDSF）技術(shù)，廣泛應(yīng)用于蛋白質(zhì)穩(wěn)定性研究、蛋白質(zhì)類大分子藥物（抗體）優(yōu)化工程、蛋白質(zhì)類疾病靶點(diǎn)的藥物小分子篩選和結(jié)合力測定等領(lǐng)域，具有快速、準(zhǔn)確、高通量等諸多優(yōu)點(diǎn)。蛋白質(zhì)中色氨酸/酪氨酸的熒光性質(zhì)與它們所處的環(huán)境息息相關(guān)，因此可以通過檢測蛋白內(nèi)部色氨酸/酪氨酸在加熱或者添加變性劑過程中的熒光變化，測定蛋白質(zhì)的化學(xué)和熱穩(wěn)定性。

PSA-16采用紫外雙波長檢測技術(shù)，可精準(zhǔn)測定蛋白質(zhì)去折疊過程中色氨酸和酪氨酸熒光的變化，獲得蛋白的Tm值和Cm值等數(shù)據(jù)；測定時(shí)無需額外添加染料，不受緩沖液條件的限制且測試的蛋白質(zhì)樣品濃度范圍非常廣（10 µg/ml - 250 mg/ml），因此可廣泛用于去垢劑環(huán)境中的膜蛋白和高濃度抗體制劑的穩(wěn)定性研究。此外，PSA-16具有非常高的數(shù)據(jù)采集速度，從而可提供超高分辨率的數(shù)據(jù)。同時(shí)PSA-16一次最多可同時(shí)測定16個(gè)樣品，通量高；每個(gè)樣品僅需要15 uL，樣品用量少，非常適合進(jìn)行高通量篩選。PSA-16操作簡單，使用后無需清洗，幾乎無維護(hù)成本。

多功能蛋白穩(wěn)定性分析儀PSA-16應(yīng)用涵蓋植物、生物學(xué)、動物科學(xué)、動物醫(yī)學(xué)、微生物學(xué)、工業(yè)發(fā)酵、環(huán)境科學(xué)、農(nóng)業(yè)基礎(chǔ)、蛋白質(zhì)工程等多學(xué)科領(lǐng)域。蛋白質(zhì)是最終決定功能的生物分子，其參與和影響著整個(gè)生命活動過程?，F(xiàn)代分子生物學(xué)、環(huán)境科學(xué)、動醫(yī)動科、農(nóng)業(yè)基礎(chǔ)等多種學(xué)科研究的很多方向都涉及蛋白質(zhì)功能研究，以及其下游的各種生物物理、生物化學(xué)方法分析，提供穩(wěn)定的蛋白質(zhì)樣品是所有蛋白質(zhì)研究的先決條件。因此多功能蛋白質(zhì)穩(wěn)定性分析系統(tǒng)在各學(xué)科的研究中都有基礎(chǔ)性意義。

1.    抗體或疫苗制劑、酶制劑的高通量篩選

2.    抗體或疫苗、酶制劑的化學(xué)穩(wěn)定性、長期穩(wěn)定性評估、等溫穩(wěn)定性研究等

3.    生物仿制藥相似性研究（Biosimilar Evaluation）

4.    抗體偶聯(lián)藥物（ADC）研究

5.    多結(jié)構(gòu)域去折疊特性研究

6.    物理和化學(xué)條件強(qiáng)制降解研究

7.    蛋白質(zhì)變復(fù)性研究（復(fù)性能力、復(fù)性動力學(xué)等）

8.    膜蛋白去垢劑篩選，膜蛋白結(jié)合配體篩選（Thermal Shift Assay）

9.    基于靶標(biāo)的高通量小分子藥物篩選（Thermal Shift Assay）

10.    蛋白純化條件快速優(yōu)化等